田发青1季德兰2李举亨1唐玫琴1李惠卿3黄映彩3成小慧1
(1深圳市龙岗区人民医院血液内科广东深圳518172)
(2深圳市龙岗区人民医院中央悦城社康广东深圳518172)
(3深圳市龙岗区人民医院血细胞实验室广东深圳518172)
【摘要】目的:研究多种抗原促进树突状细胞(dendriticcells,DCs)成熟作用。方法:外周血单核细胞培养为DC,分别负载卡介苗、肺炎球菌疫苗、麻疹疫苗、K562及RPMI8266冻溶抗原后与T淋巴细胞共培养,以单独加入TNF-a为对照组,再加入相同体积培养基作为空白对照,观察DC形态,流式细胞仪分析DC表型,CCK8法测定混合淋巴细胞反应(MLR)。结果:各组均培养出具有典型形态的DC,其中疫苗各组细胞CD83表达较肿瘤细胞各组明显升高,MLR作用强,而肿瘤组抗原又较对照组和空白对照组为高,同时各实验组CD1a表达较对照组和空白对照组明显降低,P<0.05,但各实验组CD1a表达未见明显差异,P>0.05。结论:卡介苗、肺炎球菌疫苗及麻疹疫苗等微生物抗原促进DC成熟能力较K562及RPMI8266等肿瘤抗原能力强。
【关键词】抗原;树突状细胞;CD83;混合淋巴细胞反应
【中图分类号】R331.1+44【文献标识码】A【文章编号】2095-1752(2016)08-0385-02
Multiplekindsofantigeninducedendriticcellstomaturation1TianFaqing,2JiDelan1LIJuheng,1TangMeiqin,3LIHuiqing,3HuangYingcai,1ChengXiaohui1DepartmentofHematology,LonggangDistrictPeople’sHospitalofShenzhen;2BloodCellLaboratory,LonggangDistrictPeople’sHospitalofShenzhen,Guangdong,518172,China
【Abstract】ObjectiveToinvestigatethecapabilityofmultiplekindsofantigens(Ags)topromotedendriticcells(DCs)mature.MethodsDCswereinducedfromperipheralbloodmononuclearcellsloadeddifferentAgssuchasBCG,pneumococcalvaccine,measlesvaccine,K562andRPMI8266-freeze-thawAgs,thentobeco-culturedwithTlymphocytes.TNF-aonlywasaddedascontrolgroup,andTNF-aandthesamevolumeofmediumasAgwereaddedasablankcontrol.DCmorphologywasobservedbyinvertedmicroscope,DCphenotypewasanalyzedbyflowcytometry,andmixedlymphocytereaction(MLR)wasdeterminedbyCCK8kits.ResultsCellsineachgroupwereinducedtohavethetypicalmorphologyofDC,whichCD83expressionwassignificantlyhigherinvaccinegroupsthanintumorcellgroups,andwashigherintumorcellgroupsthanincontrolgroupandblankcontrolgroup,whileCD1aexpressionwassignificantlylowerineachexperimentalgroupthanincontrolgroupandblankcontrolgroup,P<0.05,butCD1aexpressionineachexperimentalgrouphadstillnosignificantdifference,P>0.05.ConclusionMicrobialAgssuchasBCG,pneumococcalvaccineandmeaslesmaybetterpromoteDCmaturationthantumorcellantigenssuchasK562andRPMI8266.
【Keywords】Antigen;Dendriticcell;CD83;Mixedlymphocytereaction
树突状细胞(dendriticcells,DCs)是目前已知的功能最强大的抗原递呈细胞[1],DC在人体内所占数量极微,约为外周血单个核细胞总数的0.5~1.0%。目前以GM-CSF、IL-4处理末梢血中的单核细胞或CD34细胞,可诱导培养出大量DC。本课题观察各种不同抗原刺激对DC功能的影响。
1.材料和方法
1.1主要试剂
卡介苗(BCGV)、肺炎球菌疫苗、麻疹疫苗为友情惠赠,rhGM-CSF、rhIL-4、rhTNF-α,抗人CD1a-PE、CD4-FITC、CD11c-PE、CD80-FITC、CD83-FITC、CD86-PE、HLA-DR-FITC单抗为Burlingame公司产品.CCK8试剂盒为Dojindo,Kumamoto,Japan产品,K562细胞和骨髓瘤RPMI8266由中山大学血液病研究所惠赠。
1.2单个核细胞的分离
所采集标本得到健康志愿者本人自愿同意并签署同意书,实验通过医院伦理委员会批准。采集外周血50ml(40u/ml肝素抗凝)加等体积的PBS液稀释,具体步骤参见文献[2],收集贴壁细胞,作为单核细胞培养DC。非贴壁细胞作为T淋巴细胞。
1.3DC培养
调整单核细胞浓度为106/ml,具体步骤参考文献[2],根据分组分别加入稀释的卡介苗、肺炎球菌疫苗、麻疹疫苗(疫苗各组)及K562细胞、RPMI8266细胞冻溶物(肿瘤细胞组)后培养48小时。单独加入TNF-a作为单纯TNF-a组(对照组),仅仅加入相同体积培养基作为空白对照。
1.4混合淋巴细胞反应(mixedlymphocytereactionMLR)
培养成熟DCs用丝裂霉素(25μg/L)处理1h去增殖后作为刺激细胞,调整细胞浓度为106/ml后,分别与外周血分离的T淋巴细胞(2×105个/ml)在96孔平底培养板中混合培养5天(DC:T细胞分别为1:100,1:50,1:10,1:1)。终体积为每孔200μl,对每个浓度均作4个平行孔。另设T细胞对照孔,并以同样抗原处理后的单核细胞(Mo)与T细胞共培养孔作为DC与T淋巴细胞作用的对照孔。培养第五天以CCK8法测定混合MLR,用酶标仪检测波长450nm时的吸光度(A)值,参比波长为630nm,结果取均值。算增殖指数(PI)。PI=ADC+Tcell–ADC/ATcell–Ablank。
1.5流式细胞仪(FCM)检测
DCs培养第7天,FCM测定其膜CD分子表达调节。取细胞悬液100μl/管(细胞浓度为1×106/ml),分别加入相应单克隆抗体各15μl,混匀后置室温下暗室反应30min,离心、洗涤、固定备作FCM测定。CellQuest软件进行分析。
1.6统计学分析
采用SPSS16.0软件,所测数据用均数±标准差(x-±s)表示,采用theStudents’Ttest。P<0.05表示有统计学意义。
2.实验结果
2.1DCs形态学
新分离的骨髓单个核细胞呈球形散在分布,表面光滑;培养48h后,培养5-7d后细胞均匀分散,进一步变形,体积增大,胞浆丰富,具有典型DC形态。各组形态学在光学显微镜下观察未见明显差异。见图1。
图1树突状细胞培养。培养第一天(左侧),第5天(右侧)
2.2DCs免疫表型
各组第7天DCFCM测定免疫表型,HLA-DR、CD80、CD86、CD11c均高表达,未见明显统计学差异,P>0.05。卡介苗、肺炎球菌及麻疹疫苗组CD83较其他各组明显升高,差异有统计学意义,P<0.05,K562细胞组、RPMI8266细胞组较单纯TNF-a组及空白对照组CD83表达升高,差异亦有统计学意义,P<0.05。疫苗各组及肿瘤细胞各组之间比较差异未见统计学意义,P>0.05。各种抗原刺激组CD1a较单纯TNF-a及空白对照组下降,差异有统计学意义,P<0.05。表1。
2.3MLR
DC刺激淋巴细胞增殖指数(PI)能力呈数量依赖性,其中卡介苗、肺炎球菌疫苗及麻疹疫苗组等DC较其他各组MLR增强,差异有统计学意义,P<0.05。K562及RPMI8266细胞组较单纯TNF-a及空白对照组亦明显增强,差异有统计学意义,P<0.05,但疫苗各组及肿瘤细胞各组间比较无统计学差异,P>0.05,见图2。
图2混合淋巴细胞反应(MLR)。
3.讨论
DC是唯一一类可直接活化静息T细胞的APCs,多种抗原通过DC递呈抗原激活Na?veT细胞[3]。一般递呈外源性抗原例如微生物抗原通过MHC-II类分子,使Na?veT细胞向CD4+T细胞方向发展,递呈内源性抗原如肿瘤抗原通过MHC-类分子,使Na?veT细胞向CD8+T细胞方向发展,发挥CTL(细胞毒性T细胞)效应[2][4]。本研究中以GM-CSF、IL-4、TNF-a等细胞因子联合或不联合各种抗原处理末梢血中的单核细胞,培养5~7d后细胞均具有典型树突状突起细胞形态,FCM证实具有典型的DC免疫学表型,成熟标志CD83阳性,且MLR实验提示T淋巴细胞在DC作用下明显扩增,呈剂量依耐性,提示该DC是有功能的DC。以上实验结果证明各组细胞均被培养为有功能的成熟DC。
成熟DC不具有抗原吞噬和处理作用,但具有很强的抗原提呈能力和与T细胞相互作用的能力,不需要CD4辅佐细胞就能诱导CD8细胞增殖和CTL反应[5]。目前应用细胞因子成功培养出不同来源(脐血、健康人、慢粒患者外周血)的DC,通过TNF-α等细胞因子及联合多种抗原促进DC成熟。资料显示使用卡介苗等多种疫苗及经CML冻融抗原刺激后的DC能表现出强于未刺激的特异性CTL效应[2];应用干扰素联合传统细胞因子,可以诱导出CML患者来源DC的成熟。本研究结果提示微生物抗原联合TNF-α促进DC表达CD83最高,其MLR效应最强,提示微生物抗原联合TNF-α促DC成熟作用最强,而K562、RPMI8266肿瘤细胞抗原作用其次,均较单纯TNF-α作用强。不成熟DC诱导免疫耐受,导致抗肿瘤效应无能[6]。因此,在DC肿瘤疫苗研究中,诱导成熟DC是一个重要问题。本研究提示微生物抗原联合肿瘤抗原可能更有效促进DC成熟。
【参考文献】
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[4]MartinK,SchreinerJ,ZippeliusA.ModulationofAPCFunctionandAnti-TumorImmunitybyAnti-CancerDrugs[J].FrontImmunol.2015Sep29;6:501.
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基金项目:
深圳市科技创新项目科技研发基金No.JCYI20140414123738256;深圳市龙岗区科技发展基金No.YLWS20150514150041453。